Методика определения суммы фенольных соединений в грибе Сlimacodon septentrionalis (Fr.) P. Karst.

Введение. Паразитарный гриб климакодон северный (Сlimacodon septentrionalis (Fr.) P. Karst.) на данный момент малоизучен, но известно, что он обладает антиоксидантной активностью, что может быть использовано в медицине. На территории Республики Беларусь зарегистрирован лишь один лекарственный препарат грибного происхождения и ряд биологически активных добавок к пище. Отсутствует информация об оптимальных методах и методиках получения извлечения из сырья грибного происхождения c максимально возможным содержанием фенольных соединений, а также методики их определения.

Цель. Разработать методику определения суммы фенольных соединений в грибе Climacodon septentrionalis.

Материалы и методы. Объектом исследования являлись плодовые тела гриба климакодона северного, выращенные в естественных условиях и хранящиеся при температуре –18 °С. В ходе исследования использовались следующие реактивы: реактив Фолина – Чиокалтеу (ООО «Аналит Комплект», Россия), натрий углекислый безводный (х.ч., ООО «АО РЕАХИМ», Россия), спирт этиловый технический (марки «Экстра-М», 96,41 %), вода очищенная; стандарт – галловая кислота (98 %, Acros Organics BVBA, Бельгия); оборудование: весы аналитические Explorer EX125D, спектрофотометр SOLAR PB 2201, плитка электрическая Goodhelper ES-10P10, баня водяная WB-12, аквадистиллятор электрический АЭ-25.

Результаты и обсуждение. Оптимальным способом извлечения фенольных соединений из климакодона северного является экстрагирование водой при температуре 100 °С и соотношении сырье : экстрагент 1 : 20 в течение 150 мин однократно. Извлечение оставляют для остывания при комнатной температуре, процеживают через ватный тампон, доводят при необходимости водой до исходного объема. При определении суммы фенольных соединений в пересчете на галловую кислоту рекомендуется использовать 0,10 мл извлечения, 0,45 мл реактива Фолина – Чокальтеу, перемешивание, добавление 5,25 мл 10%-го раствора натрия карбоната, перемешивание, время реакции 16 мин, измерение оптической плотности при длине волны 760 нм.

Заключение. Концентрация суммы фенольных соединений в пересчете на галловую кислоту в полученном извлечении составляет 202 ± 5 мкг/мл или 0,41 ± 0,01 % при пересчете на сырую массу сырья климакодона северного.

1. Denisenko T. A., Vishnikin A. B., Tsiganok L. P. Reaction features of 18-molibdodiphosphate and Folin-Ciocalteu reagent with phenolic compounds. Analytics and Control. 2015;19(3):242–251. (In Russ.) DOI: 10.15826/analitika.2015.19.3.001.

2. Escarpa А., González M. C. Approach to the content of total extractable phenolic compounds from different food samples by comparison of chromatographic and spectrophotometric methods. Analytica Chimica Acta. 2011;427(1):119–127. DOI: 10.1016/S0003-2670(00)01188-0.

3. Özyrek M., Güçlü K., Tütem E., Başkan K. S., Erçağ E., Çelik S. E., Baki S., Yıldız L., Karamanc Ş., Apak R. A comprehensive review of CUPRAC methodology. Analytical Methods. 2011;3(11):2439–2453.

4. Ignat I., Volf I., Popa V. I. A critical review of methods for characterisation of polyphenolic compounds in fruits and vegetables. Food Chemistry. 2011;126(4):1821–1835. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.12.026.

5. Jurd L. Aluminium complexes of phenolic flavones. Spectral and structural correlation. Phytochemistry. 1969;8(2):445–462. DOI: 10.1016/S0031-9422(00)85447-3.

6. Wu J., Tsujimori M., Hirai H., Kawagishi H. Novel compounds from the mycelia and fruiting bodies of Climacodon septentrionalis. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 2011;75(4):783–785. DOI: 10.1271/bbb.100849.

7. Jia X., Zheng K., Liu S., Xu C. Optimization, Purification, Characterization, and Antioxidant Activity of Exopolysaccharide Produced by the Northern Tooth Mushroom, Climacodon septentrionalis (Basidiomycota). International Journal of Medicinal Mushrooms. 2015;17(9):857–866.

8. Tsiarletskaya V., Lukashou R. Dynamics of the accumulation of phenolic compounds in Taraxacum officinale roots, leaves and flowers. Revista Farmaceutică a Moldovei. 2021;45(1):58–61.

9. Whaley A. K., Whaley A. O., Novikova V. V., Vasiliev V. O., Klemper A. V., Lukashov R. I., Mandrik N. I., Gurina N. S., Yakovlev G. P., Luzhanin V. G. Antimicrobial and Antioxidant Activity Screening of Mushrooms Growing in the Leningrad Region. Drug development & registration. 2023;12(4):111–125. (In Russ.) DOI: 10.33380/2305-2066-2023-12-4-1576.