Выделение, идентификация и количественное определение антраценпроизводных в подземных органах Rumex crispus

Введение. На данный момент в Государственную фармакопею Российской Федерации включен только один представитель рода щавель – щавель конский (Rumex confertus Willd.). Поэтому наше внимание привлекли другие представители этого рода и более подробно был изучен щавель курчавый (Rumex criptus L.). Важная задача – определение схожести состава в рамках расширения сырьевой базы.

Цель. Определение качественного и количественного содержания антрахинонов в корнях представителя рода Rumex – щавеля курчавого (R. crispus).

Материалы и методы. В качестве анализируемых растворов использовались спиртовые извлечения подземных органов R. crispus. Хроматографическое разделение и детектирование проводили на высокоэффективном жидкостном хроматографе «Хроматэк-Кристалл ВЭЖХ 2014» (ЗАО СКБ «Хроматэк», Россия), оборудованном колоночным термостатом, хроматографической колонкой Grace HPLC Column Platinum C18-EPS, 250 × 4,6 мм, 5 мкм (Grace, США). Количественное определение проводилось на спектрофотометре СФ-2000 (ООО «ОКБ Спектр», Россия).

Результаты и обсуждение. В работе объектом исследования был щавель курчавый, содержащий большое количество биологически активных веществ. В корнях щавеля курчавого методом ВЭЖХ-УФ были идентифицированы и количественно определены антраценпроизводные, такие как эмодин-8-гликозид, эмодин, хризофановая кислота, и методом спектрофотометрии было определено суммарное количество антраценпроизводных.

Заключение. Суммарное содержание антраценпроизводных в подземных органах R. crispus L. фазы отмирания равно 4,953 %. Методом ВЭЖХ-УФ были определены эмодин, количественное содержание которого составило 0,198 %, и хризофанол, с содержанием 0,757 %.

1. Prakash Mishra A., Sharifi-Rad M., Shariati M. A., Mabkhot Y. N., Al-Showiman S. S., Rauf A., Salehi B., Župunski M., Sharifi-Rad M., Gusain P., Sharifi-Rad J., Suleria H. A. R., Iriti M. Bioactive compounds and health benefits of edible Rumex species-A review. Cellular and Molecular Biology. 2018;64(8):27–34. DOI: 10.14715/cmb/2018.64.8.5.

2. Salama S. A., AL-Faifi Z. E., Masood M. F., El-Amier Y. A. Investigation and Biological Assessment of Rumex vesicarius L. Extract: Characterization of the Chemical Components and Antioxidant, Antimicrobial, Cytotoxic, and Anti-Dengue Vector Activity. Molecules. 2022;27(10):3177. DOI: 10.3390/molecules27103177.

3. Wang Q., Yang J.-B., Wang Y., Li Y.-Y., Wen H.-R., Zhang Y.-J., Ma S.-C. Toxicokinetics of emodin-8-O-β-D-glucoside in rats in vivo. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2022;47(15):4214– 4220. DOI: 10.19540/j.cnki.cjcmm.20220516.701.

4. Seitimova G. A., Shokan A. K., Tolstikova T. G., Zhukova N. A., Korulkin D. Yu., Kudrina N. O., Litvinenko Yu. A., Meduntseva N. D., Terletskaya N. V., Kulmanov T. E. Antiulcer activity of anthraquinone–flavonoid complex of Rumex tianschanicus Losinsk. Molecules. 2023;28(5):2347. DOI: 10.3390/molecules28052347.

5. Berillo D., Kozhahmetova M., Lebedeva L. Overview of the Biological Activity of Anthraquinons and Flavanoids of the Plant Rumex Species. Molecules. 2022;27(4):1204. DOI: 10.3390/molecules27041204.

6. Poluyanov A. M., Sokolova A. Yu., Malashenko E. A., Sergunova E. V., Bobkova N. V. Isolation, Identification and Quantitative Determination of Anthracene Derivatives by HPLC-UV Method in the Raw Materials of Some Rep resentatives of the Genus Rumex of Three Vegetation Ti mes. Drug development & registration. 2022;11(4):216–225. DOI: 10.33380/2305-2066-2022-11-4-216-225.

7. Nigussie G. Isolation and Characterization of the Roots of Rumex nervosus. Journal of Tropical Pharmacy and Che mistry. 2020;5(1):39–50. DOI: 10.25026/jtpc.v5i1.241.

8. Eom T., Kim E., Kim J.-S. In Vitro Antioxidant, Antiinflam mation, and Anticancer Activities and Anthraquinone Content from Rumex crispus Root Extract and Fractions. Anti oxidants. 2020;9(8):726. DOI: 10.3390/antiox9080726.

9. Demirezer L. Ö. Concentrations of Anthraquinone Glycosides of Rumex crispus during Different Vegetation Sta ges. Zeitschrift für Naturforschung C. 2014;49(7–8):404–406. DOI: 10.1515/znc-1994-7-802.

10. Feduraev P., Chupakhina G., Maslennikov P., Tacenko N., Skrypnik L. Variation in phenolic compounds content and antioxidant activity of different plant organs from Rumex crispus L. and Rumex obtusifolius L. at different growth stages. Antioxidants. 2019;8(7):237. DOI: 10.3390/antiox8070237.

11. Pan Y., Zhao X., Kim S.-H., Kang S.-A., Kim Y.-G., Park K.-Y. Anti‐inflammatory effects of Beopje curly dock (Rumex crispus L.) in LPS‐induced RAW 264.7 cells and its active compounds. Journal of Food Biochemistry. 2020;44(7): e13291. DOI: 10.1111/jfbc.13291.

12. Li Y.-X., Li N., Li J.-J., Zhang M., Zhu H.-T., Wang D., Zhang Y.-J. New seco-anthraquinone glucoside from the roots of Rumex crispus. Natural Products and Biopros pecting. 2022;12(1):29. DOI: 10.1007/s13659-022-00350-3.